2012年03月, 第６回日本ゲノム微生物学会年会優秀発表賞, 非コードDNA領域単独によるプラスミド分配システムの解析
林宏恵

〔主要な業績〕Complete genome sequence of Pseudoalteromonas sp. PS1M3, a psychotropic bacterium isolated from deep-sea sediment off the Boso Peninsula, Japan Trench
Nikaido; Y.; Y. Gun; M. Taguchi; S. Chohnan; T. Nishizawa; Y. Kurusu, 責任著者, Elesevier B.V.
Mar. Genom., 2023年04月, ［査読有り］

〔主要な業績〕Complete genome sequence of a psychotropic bacterium, Pseudoalteromonas sp. strain APM04, isolated from the seafloorof the South Mariana Trough, Pacific Ocean.
Taguchi; M.; Y. Gun; T. Nishizawa; S. Chohnan; Y. Kurusu., 責任著者, Am Soc Microbiol
Microbiol. Resour. Ann., 2022年08月, ［査読有り］

〔主要な業績〕Complete genome sequence of a chemolithoautotrophic iron-oxidizing bacterium, Acidithiobacillus ferrooxidans strain NFP31, isolated from volcanic ash deposits on Miyake-Jima, Japan.
Kato; T.; Y. Gun; R.; Fujimura; T.; Nakamura; T.; T; Nishizawa.; Y. Kurusu.; H; Ohta., Am Soc Microbiol
Microbiol. Resour. Ann., 2022年01月

Comparative Analysis of the Genetic Basis of Branched Nonylphenol Degradation by Sphingobium amiense DSM 16289T and Sphingobium cloacae JCM 10874T　　　　　　　　　　　　　　　
MINA OOTSUKA; TOMOYASU NISHIZAWA; MORIFUMI HASEGAWA; YASUROU KURUSU; HIROYUKI OHTA, Microbes and Environments
Microbes and Environments, 2018年12月05日, ［査読有り］

Benefits and difficulties of organic and conventional rice farming systems in Bali, Indonesia　　　　　　　　　　　　　　　
Oyama K; Sudiarta P; Shiotsu F; Sakagami N; Komatsuzaki M; Nitta Y; Kurusu Y; Suprapta DN
Tropical Agriculture and Development., 2017年, ［査読有り］

Efficient butanol recovery from acetone-butanol-ethanol fermentation cultures grown on sweet sorghum juice by pervaporation using silicalite-1 membrane
Miho Kanemoto; Hideyuki Negishi; Keiji Sakaki; Toru Ikegami; Shigeru Chohnan; Youji Nitta; Yasurou Kurusu; Hiroyuki Ohta, We investigated butanol recovery by pervaporation separation, using a silicalite-1 membrane, from batch cultures of butanol-producing Clostridium beijerincicii SBP2 grown on sweet sorghum juice as a fermentation medium. The pervaporation system yielded 73% (w/v) butanol from intact feed cultures containing 1% (w/v) butanol, and had a butanol permeation flux of 11 g m(-2) h(-1). Upon neutralization and activated charcoal treatment of the feed cultures, butanol yield and total flux increased to 82% (w/v) and 40 g m(-2) h(-1), respectively. This system is applicable to refining processes for practical biobutanol production from a promising energy crop, sweet sorghum. (C) 2015 The Society for Biotechnology, Japan. All rights reserved., SOC BIOSCIENCE BIOENGINEERING JAPAN
JOURNAL OF BIOSCIENCE AND BIOENGINEERING, 2016年06月, ［査読有り］

DNA regions responsible for maintenance of Sphingobium plasmid pYAN-2
HIROE HAYASHI; YASUROU KURUSU, 責任著者, We have identifed and analyzed two DNA regions responsible for stable maintenance of a plasmid in the genus Sphingomonas and Escherichia coli. A 37 bp fragment, upstream of the repA gene, is required for stable maintenance of the low-copy-number small plasmid pYAN-2 (4,687 bp) from Sphingobium yanoikuyae. It does not encode any signifcant protein sequence and has one direct repeat for possible secondary structures. Moreover, a 70 bp fragment, upstream of the above sequence, completely stabilized the unstable pSC101 plasmid in E. coli.
Microbes and Environments, 2014年03月20日, ［査読有り］

Analysis of a DNA region from low-copy-number plasmid pYAN-1 of Sphingobium yanoikuyae responsible for plasmid stability
Hiroe Hayashi; Yasuroh Kurusu, We identified and analyzed a DNA region that is required for the stable maintenance of plasmids in the genus Sphingomonas. This DNA fragment, a 244 bp, is localized in the upstream region of the repA gene of low-copy-number small plasmid pYAN-1 (4896 bp) of Sphingobium yanoikuyae. It has four inverted repeats and one direct repeat for possible secondary structures. We were able to stabilize not only another unstable plasmid, pYAN-2, in the genus Sphingomonas, but also the unstable plasmid pSC101 without par locus in Escherichia coli. The copy-number levels between the unstable plasmid and the parental plasmid were similar, and these results suggest that the stabilization of unstable plasmids by this DNA region of pYAN-1 was not due to an increase in plasmid copy number. We concluded that the stabilization of the plasmid was due to a plasmid partition mechanism encoded by a DNA fragment of pYAN-1., TAYLOR & FRANCIS LTD
BIOSCIENCE BIOTECHNOLOGY AND BIOCHEMISTRY, 2014年, ［査読有り］

Fuel ethanol production from sweet sorghum using repeated-batch fermentation
Shigeru Chohnan; Megumi Nakane; M. Habibur Rahman; Youji Nitta; Takanori Yoshiura; Hiroyuki Ohta and Yasurou Kurusu, 責任著者, Ethanol was efficiently produced from three varieties of sweet sorghum using repeated-batch fermentation without pasteurization or acidification. Saccharomyces cerevisiae cells could be recycled in 16 cycles of the fermentation process with good ethanol yields. This technique would make it possible to use a broader range of sweet sorghum varieties for ethanol production. (C) 2010, The Society for Biotechnology, Japan. All rights reserved., SOC BIOSCIENCE BIOENGINEERING JAPAN
Journal of Bioscience and Bioengineering, 2011年04月27日, ［査読有り］

Marine integrons containing novel integrase genes, attachment sites, attI,and associated gene cassettes in polluted sediments from Suez and Tokyo Bays
H.Elsaied; H W. Stokes; K. Kitamura; Y. Kurusu; Y. Kamagata; and A. Maruyama., In order to understand the structure and biological significance of integrons and associated gene cassettes in marine polluted sediments, metagenomic DNAs were extracted from sites at Suez and Tokyo Bays. PCR amplicons containing new integrase genes, intI, linked with novel gene cassettes, were recovered and had sizes from 1.8 to 2.5 kb. This approach uncovered, for the first time, the structure and diversity of both marine integron attachment site, attI, and the first gene cassette, the most efficiently expressed integron-associated gene cassette. The recovered 13 and 20 intI phylotypes, from Suez and Tokyo Bay samples, respectively, showed a highly divergence, suggesting a difference in integron composition between the sampling sites. Some intI phylotypes showed similarity with that from Geobacter metallireducens, belonging to Deltaproteobacteria, the dominant class in both sampling sites, as determined by 16S rRNA gene analysis. Thirty distinct families of putative attI site, as determined by the presence of an attI-like simple site, were recovered. A total of 146 and 68 gene cassettes represented Suez and Tokyo Bay unsaturated cassette pools, respectively. Gene cassettes, including a first cassette, from both sampling sites encoded two novel families of glyoxalase/bleomycin antibiotic-resistance protein. Gene cassettes from Suez Bay encoded proteins similar to haloacid dehalogenases, protein disulfide isomerases and death-on-curing and plasmid maintenance system killer proteins. First gene cassettes from Tokyo Bay encoded a xenobiotic-degrading protein, cardiolipin synthetase, esterase and WD40-like beta propeller protein. Many of the first gene cassettes encoded proteins with no ascribable function but some of them were duplicated and possessed signal functional sites, suggesting efficient adaptive functions to their bacterial sources. Thus, each sampling site had a specific profile of integrons and cassette types consistent with the hypothesis that the environment shapes the genome. The ISME Journal (2011) 5, 1162-1177; doi:10.1038/ismej.2010.208; published online 20 January 2011 Subject Category: integrated genomics and post-genomics approaches in microbial ecology, NATURE PUBLISHING GROUP
ISME Journal, 2011年01月20日, ［査読有り］

Characterization of two compatible small plasmids from Sphingobium yanoikuyae
雄長誠、斉藤美有紀、久留主泰朗, 責任著者, We isolated and characterized two small cryptic indigenous plasmids, pYAN-1 (4,896bp) and pYAN-2 (4,687bp), from Sphingobium yanoikuyae, and developed a versatile system that permitted genetic manipulation of the genus Sphingomonas. Nucleotide sequencing of both plasmids revealed that they contained mobA, mobs, and repA genes, which are predicted to encode proteins associated with mobilization and replication, in common. Transformation with each plasmid harboring the antibiotic resistance gene by electroporation was fully successful, using Novosphingobium capsulatum as a host., TAYLOR & FRANCIS LTD
Bioscience Biotechnology and Biochemistry, 2008年04月, ［査読有り］

Identification of in vivo substrate of the chaperonin GroEL from Bacillus subtilis
A. Endo and Y. Kurusu, 責任著者, We investigated GroEL substrates from Bacillus subtilis 168 using the single-ring mutant of B. subtilis GroEL. We identified 28 candidates for GroEL substrates, of which Spo0B, Ald, Eno, SpoIIP, and FbaA were involved in spore formation, and Rnc, Tuf, Eno, Tsf, and FbaA were essential for B. subtilis growth. As observed at the protein level, the amount of SpoIIP interaction with GroEL increased at 3 h after initiation of sporulation., TAYLOR & FRANCIS LTD
Bioscience Biotechnology and Biochemistry, 2007年04月23日, ［査読有り］

Genetic transformation system for members of the Genera, Sphingomonas, Sphingobium, Novosphingobium and Sphingopyxis
M. Saito; Y. Ikunaga; H. Ohta and Y. Kurusu, 責任著者, This paper describes a plasmid transformation system that permits genetic manipulation of the genus Sphingomonas. A cryptic indigenous plasmid, pAMI-1, of 10 kb from Sphingobium amiense was isolated and characterized. Nucleotide sequencing revealed that pAMI-1 contains five open reading frames, which are predicted to encode proteins associated with integration, recombination, conjugation and replication. Escherichia coli-S. amiense shuttle vectors were successfully introduced into Sphingomonas, Sphingobium, Novosphingobium and Sphingopyxis strains by electroporation. The copy number of the shuttle vector was estimated to be 1-2 per chromosome in the Sphingobium yanoikuyae cell. © 2006, Japanese Society of Microbial Ecology &
The Japanese Society of Soil Microbiology. All rights reserved.
Microbes and Environments, 2006年12月, ［査読有り］

Temperature adaptation of Bacillus subtilis by chromosomal groEL replacement
A. Endo; M. Sasaki; A. Maruyama; and Y. Kurusu, 責任著者, We investigated a temperature adaptation of Bacillus subtilis 168 in which chromosomal groEL was replaced with a psychrophilic groEL. This strain can grow at 50 degrees C but not at 51 degrees C, a temperature at which wild-type B. subtilis can grow. Using in vivo random mutagenesis by the B. subtilis mutator strain (mutS, mutM, mutY), two thermo-adaptants were isolated from the groEL substituted strain at 52 degrees C. They contained novel amino acid alterations in their ATP binding motif (T931) and the inter-monomer contact (R285H) region of GroEL. These results suggest that GroEL participates in bacterial temperature adaptation., TAYLOR & FRANCIS LTD
Bioscience Biotechnology and Biochemistry, 2006年10月, ［査読有り］

Transformation of Escherichia coli mediated by natural phospholipids.
Y. Sato; N. Kumazawa; K. Yoshikawa; and Y. Kurusu., 責任著者, Transformation system for Escherichia coli based upon introduction of plasmid DNA by natural phospholipids has been developed. Transformants are easily obtained by treatment with natural phospholipids such as phosphatidylethanolamine, phosphatidylcoline, and phosphatidylserine, where the presence Of MgCl2 or CaCl2 is essential. This method of transformation is applicable not only for small plasmid pHSG399 (2.3 Kb) but also for giant plasmid R6K (100 Kb)., TAYLOR & FRANCIS LTD
Biosci. Biochem. Biotech, 2005年

Genetic analysis of an incomplete bio operon in biotin auxotrophic strain of Bacillus subtilis natto OK2
M. Sasaki; F. Kawamura; and Y. Kurusu, 責任著者, We describe the genetic analysis of the bio operon of the biotin auxotrophic Bacillus subtilis natto OK2 strain. The OK2 strain would only cross-feed with the Escherichia coli bioB mutant and also grew well in medium containing dethiobiotin. Sequencing analysis revealed two significant genetic alterations in the bioW and bioF genes within the bio operon of the OK2 strain. Complementation analysis with B. subtilis 168 bio mutants demonstrated that only the bioB gene could complement, but other bio operon genes could not. A bio(+) transformant, isolated from an OK2 strain, has biotin autotrophy., TAYLOR & FRANCIS LTD
Biosci. Biochem. Biotech., 2004年

Analysis of spontaneous base substitutions generated in mutator, strains of Bacillus subtilis.
M.Sasaki and Y.Kurusu, 責任著者, In the current studies, we investigated base substitutions in the Bacillus subtilis mutT, mutM, and mutY DNA error-prevention system. In the wild type strain, spontaneous Mutations were mainly transitions, either G:C --> A:T or A:T --> G:C. Although both transitions and transversions were observed in mut Y and mutM mutants, mutMlmutY double mutants contain strictly G:C --> T:A transversions. In the mutT strain, A:T --> C:G transversion was not observed, and over-expression of the B. subtilis mutT gene had no effect on the mutation rate in the Escherichia coli mutT strain. Using 8-oxo-dGTP-induced mutagenesis, transitions especially A:T G:C were predominant in the wild type and mitt Y strains. In contrary, transversion was high on mut Y and double mutant(mutM mutY). Finally, the opuBC and yitG genes were identified from the B. subtilis chromosome as mutator genes that prevented the transition base substitutions. (C) 2004 Federation of European Microbiological Societies. Published by Elsevier B.V. All rights reserved., ELSEVIER SCIENCE BV
FEMS Microbiol. Lett, 2004年

A nonconserved carboxy-terminal segment of GroEL contributes to reaction temperature
T. Nakamura; M. Tanaka; A. Maruyama; Y. Higashi; and Y. Kurusu., 責任著者, The role of the C-terminal segment of the GroEL equatorial domain was analyzed. To understand the molecular basis for the different active temperatures of GroEL from three bacteria, we constructed a series of chimeric GroELs combining the C-terminal segment of the equatorial domain from one species with the remainder of GroEL from another. In each case, the foreign C-terminal segment substantially altered the active temperature range of the chimera. Substitution of L524 of Escherichia coli GroEL with the corresponding residue (isoleucine) from psychrophilic GroEL resulted in a GroE with approximately wild-type activity at 25degreesC, but also at 10degreesC, a temperature at which wildtype E. coli GroE is inactive. In a detailed look at the temperature dependence of the GroELs, normal E. coli GroEL and the L524I mutant became highly active above 14degreesC and 12degreesC respectively. Similar temperature dependences were observed in a surface plasmon resonance assay of GroES binding. These results suggested that the C-terminal segment of the GroEL equatorial domain has an important role in the temperature dependence of GroEL. Moreover, E. coli acquired the ability to grow at low temperature through the introduction of cold-adapted chimeric or L524I mutant groEL genes., TAYLOR & FRANCIS LTD
Biosci. Biochem. Biotech, 2004年

Microbial diversity in hydrothermal surface to subsurface environments of Suiyo Seamount, Izu-Bonin Arc, using a catheter-type in situ growth chamber
Y. Higashi; M. Sunamura; K. Kitamura; K. Nakamura; Y. Kurusu; J. Ishibashi; T. Urabe and A. Maruyama, After excavation using a portable submarine driller near deep-sea hydrothermal vents in the Suiyo Seamount, Izu-Bonin Arc, microbial diversity was examined in samples collected from inside the boreholes using an in situ growth chamber called a vent catheter. This instrument, which we devised for this study, consists of a heat-tolerant pipe tipped with a titanium mesh entrapment capsule that is packed with sterilized inorganic porous grains, which serve as an adhesion substrate. After this instrument was deployed inside each of the boreholes, as well as a natural vent, for 3-10 days in the vicinity of hot vent fluids (maxima: 156-305degreesC), DNA was extracted from the adhesion grains, 16S rDNA was amplified, and randomly selected clones were sequenced. In phylogenetic analysis of more than 120 clones, several novel phylotypes were detected within the epsilon-Proteobacteria, photosynthetic bacteria (PSB)-related alpha-Proteobacteria, and Euryarchaeota clusters. Members of epsilon-Proteobacteria were frequently encountered. Half of these were classified between two known groups, Corre's B and D. The other half of the clones were assigned to new groups, SSSV-BE1 and SSSV-BE2 (Suiyo Seamount sub-vent origin, Bacteria domain, epsilon-Proteobacteria, groups 1 and 2). From this hydrothermal vent field, we detected a novel lineage within the PSB cluster, SSNV-BAI (Suiyo Seamount natural vent origin, Bacteria domain, alpha-Proteobacteria, group 1), which is closely related to Rhodopila globiformis isolated from a hot spring. A number of archaeal clones were also detected from the borehole samples. These clones formed a novel monophyletic clade, SSSV-AE1 (Suiyo Scamount sub-vent origin, Archaea domain, Euryarchaeota, group 1), approximately between methanogenic hyperthermophilic members of Methanococcales and environmental clone members of DHVE Group II. Thus, this hydrothermal vent environment appears to be a noteworthy microbial and genetic resource. It is also noteworthy that some of the findings presented here were made possible by the application of the in situ growth chamber into the hot fluids deep inside the boreholes. (C) 2004 Federation of European Microbiological Societies. Published by Elsevier B.V. All rights reserved., ELSEVIER SCIENCE BV
FEMS Microbiology Ecology, 2004年, ［査読有り］

Analysis of HutP-dependent transcription antitermination in the Bacillus subtilis hut operon: identification of HutP binding sites on hut antiterminator RNA and the involvement of the N-terminus of the HutP in binding of HutP to the antiterminator RNA
M. Oda; N. Kobayashi; M. Fujita; Y. Miyazaki; Y. Sadaie; Y. Kurusu and S. Nishikawa, We investigated HutP-dependent transcription antitermination of the Bacillus subtilis hut operon. In vitro transcription assays with the B. subtilis sigma (A)-containing RNA polymerase indicated that HutP inhibits transcription termination at the internal terminator by binding to the antiterminator on hut mRNA in the presence of histidine. Ethylnitrosourea modification interference assays and mutational analyses of the interference sites showed that interaction of HutP with a region containing three UAG trinucleotide sequences, which is located on top of the antiterminator structure, is critical for hut antitermination in vivo. Results from kinetic analysis of binding of HutP to RNA containing various portions of the antiterminator sequences indicated that secondary structure is required for binding of HutP to the region containing three UAG triplets in the antiterminator. The in vivo HutP antiterminator activity was reduced by the mutations in the N-terminal region of HutP. The HutP variants with H4A, R7A, I9A and Q26A mutations exhibited reduced binding affinities to the antiterminator RNA in vitro. A 25-mer peptide consisting of amino acid residues 2-26 of HutP bound to the antiterminator RNA. These results indicated that the N-terminus of HutP is involved in binding of HutP to the antiterminator RNA., BLACKWELL PUBLISHING LTD
Molecular Microbiology, 2004年

水曜海山における特異な微生物現象
丸山明彦、砂村倫成、福井学、久留主泰朗
海の研究, 2005年03月
ラスト(シニア)オーサー

超好熱性古細菌における酸化損傷塩基分解酵素の酵素学的解析　　　　　　　　　　　　　　　
加藤達弘 和田浩樹 久留主泰朗
第９３回日本生化学会大会, 2020年09月14日

大腸菌プラスミドの安定遺伝に関わるdksA及び関連遺伝子群の解析　　　　　　　　　　　　　　　
西野宮絵里華 沖田貴弘 久留主泰朗
第９３回日本生化学会大会, 2020年09月14日, 日本生化学会

深海微生物のゲノム進化に関する解析　　　　　　　　　　　　　　　
田口真秀子 久留主泰朗
第９３回日本生化学会大会, 2020年09月14日, 日本生化学会

CO2からエチレンを生成する新たなバイオプロセスの構築　　　　　　　　　　　　　　　
中村孝道、谷口惠梨、白川和樹、布施博之、平野伸一、久留主泰朗
日本農芸化学会2020年度大会, 2020年03月28日, 日本農芸化学会

好熱性古細菌における酸化損傷塩基に起因する自然突然変異の修復機構に関する解析　　　　　　　　　　　　　　　
和田浩樹 久留主泰朗
第33回日本微生物生態学会, 2019年09月10日, 日本微生物生態学会

Genomic analysis of psychrotrophic bacterium Pseudoalteromonas sp. PS1M3　　　　　　　　　　　　　　　
Yoshihito Nikaidou; Akihiko Maruyama; Yasurou Kurusu
12th International Marine Biotechnology Conference, 2019年09月09日, Japan Society for Marine Biotechnology

Characterization and diversity of MutTs that degrade oxidative damaged nucleotide, 8-oxo-dGTP, in various bacteria.　　　　　　　　　　　　　　　
Y. Kurusu; H. Wada
ASM General 119th Meeting, 2019年06月21日, American Society for Microbiology

枯草菌プラスミドの安定維持に関わる新規遺伝子の同定　　　　　　　　　　　　　　　
沖田 貴弘、渡辺 智、吉川 博文、久留主 泰朗
日本農芸化学会2019年度大会, 2019年03月24日, 日本農芸化学会

大腸菌dksA変異株における低コピー数プラスミドの安定遺伝に関する解析　　　　　　　　　　　　　　　
沖田貴弘 久留主泰朗
第13回日本ゲノム微生物学会, 2019年03月07日, 日本ゲノム微生物学会

地球環境の変遷に伴う細胞内変異原の生物進化への影響　　　　　　　　　　　　　　　
和田浩樹 久留主泰朗
ブルーアースサイエンス・テク2019, 2019年02月21日, 海洋研究開発機構

大腸菌dksA変異株におけるプラスミドの安定遺伝に関する解析　　　　　　　　　　　　　　　
中内瑛巴 久留主泰朗
第41回日本分子生物学会, 2018年11月28日, 日本分子生物学会

枯草菌内でプラスミドの安定維持に関わる新たな遺伝子の同定　　　　　　　　　　　　　　　
沖田貴弘 久留主泰朗
第17回微生物研究会, 2018年11月17日

プラスミドの複製に関与する大腸菌ompX遺伝子の解析　　　　　　　　　　　　　　　
田口真秀子 久留主泰朗
第17回微生物研究会, 2018年11月17日

プラスミドの複製に関与する大腸菌cspE遺伝子の解析　　　　　　　　　　　　　　　
西野宮絵里華 久留主泰朗
第17回微生物研究会, 2018年11月17日

枯草菌ylyA, yteA, yocK 変異株内におけるプラスミドの複製と安定性について　　　　　　　　　　　　　　　
沖田貴弘、久留主泰朗
第16回微生物研究会, 2017年11月18日, 微生物研究会

細菌ゲノムDNA中における酸化損傷塩基8-oxo-dGの生成と抑制について　　　　　　　　　　　　　　　
二階堂惟人、久留主泰朗
第16回微生物研究会, 2017年11月18日, 微生物研究会

細菌における酸化損傷塩基分解遺伝子mutTの機能解析　　　　　　　　　　　　　　　
和田浩樹、久留主泰朗
第16回微生物研究会, 2017年11月18日, 微生物研究会

大腸菌dksA変異株におけるプラスミド複製と安定分配の解析　　　　　　　　　　　　　　　
中内瑛巴、大山加奈絵、久留主泰朗
第11回日本ゲノム微生物学会, 2017年03月03日, 日本ゲノム微生物学会

大腸菌の低温培養時における酸化損傷塩基のゲノム内蓄積について　　　　　　　　　　　　　　　
宮城隆太 久留主泰朗
第15回微生物研究会, 2016年11月05日

大腸菌dksA変異株内におけるプラスミドのコピー数について　　　　　　　　　　　　　　　
中内瑛巴 久留主泰朗
第15回微生物研究会, 2016年11月05日

プラスミドpSC101の複製と安定分配に関与する宿主因子の解析　　　　　　　　　　　　　　　
大山加奈絵、小島由夏、久留主泰朗
第10回日本ゲノム微生物学会, 2016年03月05日, 日本ゲノム微生物学会

大腸菌プラスミドpSC101の複製と安定分配に関する解析　　　　　　　　　　　　　　　
大山加奈絵、鳥井隆史、小島由夏、久留主泰朗
第31回日本微生物生態学会, 2015年10月18日, 日本微生物生態学会

Sphingomonas属プラスミドpYAN-2の非コードDNA領域による安定分配機構の解析　　　　　　　　　　　　　　　
鳥井隆史、小島由夏、林宏恵、久留主泰朗
第31回日本微生物生態学会, 2015年10月17日, 日本微生物生態学会

  環境プラスミドが保持する多重型安定分配機構の解析　　　　　　　　　　　　　　　
小島由夏 林宏恵 久留主泰朗
環境微生物系学会合同大会2014, 2014年10月23日, 日本微生物生態学会

非コードDNA領域によるプラスミドpSC101の宿主内安定化とコピー数の解析　　　　　　　　　　　　　　　
小島由夏、林宏恵、久留主泰朗
日本農芸化学会関東支部大会, 2014年10月18日, 日本農芸化学会関東支部

非コードDNA領域によるプラスミド安定分配機構の遺伝学的解析—DNA結合蛋白質関連遺伝子の関与について—　　　　　　　　　　　　　　　
鳥井隆史、小島由夏、林宏恵、久留主泰朗
日本農芸化学会関東支部大会, 2014年10月18日, 日本農芸化学会関東支部

非コードDNA領域によるプラスミド安定分配機構の遺伝学的解析—膜蛋白質関連遺伝子の関与について—　　　　　　　　　　　　　　　
仲田萌々、小島由夏、林宏恵、久留主泰朗
日本農芸化学会関東支部大会, 2014年10月18日, 日本農芸化学会関東支部

Novel Partitioning System from Sphingomonas Plasmids　　　　　　　　　　　　　　　
Kojima,Y. Hayashi; H. Kurusu
ASM General 114th Meeting, 2014年05月21日, American Society for Microbiology

Novosphingobium aromaticivorans におけるDNAミスマッチ修復機構の温度依存性に関する解析　　　　　　　　　　　　　　　
白熊理沙、林 宏恵、久留主 泰朗
第８回日本ゲノム微生物学会, 2014年03月09日, 日本ゲノム微生物学会

Synechocystis sp. PCC6803株の細胞内ヌクレオチドプールにおける8-oxo-dGTP除去機構MutT-GMKシステムの解析　　　　　　　　　　　　　　　
成田 佳織、久留主 泰朗
第８回日本ゲノム微生物学会, 2014年03月08日, 日本ゲノム微生物学会

非コードDNA領域による大腸菌pSC101の安定化に関する解析　　　　　　　　　　　　　　　
小島由夏 、林 宏恵、久留主 泰朗
第８回日本ゲノム微生物学会, 2014年03月07日, 日本ゲノム微生物学会

新規なプラスミド安定分配システムの遺伝学的解析　　　　　　　　　　　　　　　
小島由夏、雄長誠、齊藤美有紀、久留主泰朗
第12回微生物研究会, 2013年10月05日, 微生物研究会、公益財団法人 応用微生物学・分子細胞生物学研究奨励会、公益社団法人 日本農芸化学会関東支部

シアノバクテリアSynechocystis sp. PCC6803由来8-oxo-dGTPaseの酵素学的解析　　　　　　　　　　　　　　　
成田佳織、久留主泰朗
第12回微生物研究会, 2013年10月05日, 微生物研究会、公益財団法人 応用微生物学・分子細胞生物学研究奨励会、公益社団法人 日本農芸化学会関東支部

細菌由来ミスマッチDNA修復機構の温度依存性に関する遺伝学的解析　　　　　　　　　　　　　　　
白熊理沙、林宏恵、久留主泰朗
第12回微生物研究会, 2013年10月05日, 微生物研究会、公益財団法人 応用微生物学・分子細胞生物学研究奨励会、公益社団法人 日本農芸化学会関東支部

Accumulation and prevention of oxidative damaged base, 7,8-dihydro-8-oxoguanine, in various bacteria　　　　　　　　　　　　　　　
Y.Kurusu; Y.Kojima; K.Narita; H.Hayashi
The EMBO Meeting 2013, 2013年09月25日, EMBO

Molecular analysis of novel plasmid partition system by non-coding DNA　　　　　　　　　　　　　　　
H. Hayashi; Y. Kurusu
The EMBO Meeting 2013, 2013年09月25日, EMBO

Molecular analysis of two-independent plasmid partition system by non-coding DNA　　　　　　　　　　　　　　　
Hayashi Hiroe; Kurusu Yasurou
ASM General 113th Meeting, 2013年05月21日, American Society for Microbiology

Repression of Oxidative Base (8-oxo-deoxyguanine) in Synechocystis sp. PCC6803　　　　　　　　　　　　　　　
Narita Kaori; Kurusu Yasurou
ASM General 113th Meeting, 2013年05月21日, American Society for Microbiology

嫌気性乳酸菌の酸化損傷塩基の生成と抑制に関する解析　　　　　　　　　　　　　　　
小島由夏、冨山香里、久留主泰朗
第７回日本ゲノム微生物学会, 2013年03月09日, 日本ゲノム微生物学会

光合成細菌における酸化損傷塩基分解酵素の解析　　　　　　　　　　　　　　　
成田佳織、久留主泰朗
第７回日本ゲノム微生物学会, 2013年03月08日, 日本ゲノム微生物学会

Analysis of two independent partition systems derived from Sphingomonad plasmid　　　　　　　　　　　　　　　
林宏恵、久留主泰朗
第35回日本分子生物学会, 2012年12月13日, 日本分子生物学会

Analysis of a novel plasmid partition system by non-coding DNA　　　　　　　　　　　　　　　
林宏恵、久留主泰朗
第11回微生物研究会, 2012年09月22日, 微生物研究会

Analysis of a 8-oxo-dGTPase from Synechocystis sp. PCC6803　　　　　　　　　　　　　　　
成田佳織、久留主泰朗
第11回微生物研究会, 2012年09月22日, 微生物研究会

Synthesis and repression of oxidative base (8-OH-deoxyguanine) in Synechocystis sp. PCC6803　　　　　　　　　　　　　　　
成田佳織、久留主泰朗
第28回日本微生物生態学会, 2012年09月20日, 日本微生物生態学会

Genetic analysis of the plasmid partition system by a sole non-coding DNA　　　　　　　　　　　　　　　
Hiroe Hayashi; Yasuroh Kurusu
ASM General 112th Meeting, 2012年06月18日, American Society for Microbiology

Identification of mutT genes that hydrolyzes 8-oxo-dGTP in cyanobacteria　　　　　　　　　　　　　　　
Kaori Narita; Yasuroh Kurusu
ASM General 112th Meeting, 2012年06月17日, American Society for Microbiology

シアノバクテリアにおける酸化損傷塩基除去機構の解析　　　　　　　　　　　　　　　
成田佳織 久留主泰朗
第６回日本ゲノム微生物学会, 2012年03月11日

非コードDNA領域単独によるプラスミド分配システムの解析　　　　　　　　　　　　　　　
林宏恵 久留主泰朗
第６回日本ゲノム微生物学会, 2012年03月11日

枯草菌における酸化損傷塩基の生成と抑制に関する解析　　　　　　　　　　　　　　　
佐藤侑里 佐々木真弓 久留主泰朗
第34回日本分子生物学会, 2011年12月15日

スフィンゴモナス属細菌における新奇なプラスミド安定分配機構に関する遺伝学的解析　　　　　　　　　　　　　　　
林宏恵 久留主泰朗
第34回日本分子生物学会, 2011年12月14日

新奇な非コードDNA領域によるプラスミドの安定化　　　　　　　　　　　　　　　
林宏恵、久留主泰朗
第10回微生物研究会, 2011年11月12日, 微生物研究会／千葉大学

海洋性細菌由来DNAミスマッチ修復機構の温度依存性に関する解析　　　　　　　　　　　　　　　
林宏恵 久留主泰朗
第27回日本微生物生態学会, 2011年10月09日

Genetic analysis of a novel partition system from Sphingomonad plasmids　　　　　　　　　　　　　　　
林宏恵、久留主泰朗
111th ASM General Meeting, 2011年05月22日, American Society for Microbiology

深海環境における細胞内変異原の生成と自然突然変異　　　　　　　　　　　　　　　
林 宏恵、久留主泰朗
Blue Earth 2011, 2011年03月08日

深海における細菌由来酸化損傷塩基の生成と抑制に関する解析　　　　　　　　　　　　　　　
林 宏恵、久留主泰朗
日本分子生物学会／日本生化学会合同大会, 2010年12月09日

深海環境における細胞内変異原の生成と蓄積　　　　　　　　　　　　　　　
林 宏恵、久留主泰朗
第２６回日本微生物生態学会, 2010年11月25日

海洋性Sphingomonas属細菌を宿主とする遺伝子組換え系の開発　　　　　　　　　　　　　　　
林 宏恵、久留主泰朗
マリンバイオテクノロジー学会, 2010年05月30日

Construction of a high-expression system of foreign genes in Sphingomonad　　　　　　　　　　　　　　　
Hayashi H; Kurusu Y
110th ASM General Meeting, 2010年05月25日

深海における細菌由来異常塩基の生成と抑制に関する研究　　　　　　　　　　　　　　　
林宏恵、久留主泰朗
Blue Earth 2010, 2010年03月02日, 海洋研究開発機構

分裂酵母Schizosaccharomyces pombeによるリシノール酸の生産　　　　　　　　　　　　　　　
石川大輔、矢澤彌; 木村英俊; 東田英毅; 熊谷博道; 神坂泰; 木村和義; 久留主泰朗; 植村浩
日本分子生物学会, 2009年12月12日

Sphingomonas属細菌由来プラスミドの宿主内安定分配機構の解析　　　　　　　　　　　　　　　
大森孟道、雄長誠、林宏恵、久留主泰朗
日本分子生物学会, 2009年12月11日

Sphingomonas属細菌群を宿主とする高発現ベクターの構築　　　　　　　　　　　　　　　
福田敦史、林宏恵、久留主泰朗
日本分子生物学会, 2009年12月10日

Characterization of novel plasmids from Sphingomonad　　　　　　　　　　　　　　　
Kurusu Y; Ochou M; Saito M
109th ASM General Meeting, 2009年05月20日

日本周辺海洋環境からの石油分解菌の探索とプラスミド解析　　　　　　　　　　　　　　　
菊地真由美、関香織、西村彰浩、久留主泰朗、北村恵子、布施博之、丸山明彦
第２４回日本微生物生態学会, 2008年11月25日

Sphingomonas属細菌を宿主とする高発現ベクターの開発　　　　　　　　　　　　　　　
新國洋介、久留主泰朗
第２４回日本微生物生態学会, 2008年11月25日

Analysis of novel plasmids from Sphingomonad　　　　　　　　　　　　　　　
Ochou M; Kurusu Y
12th ISME General Meeting, 2008年08月17日

Sphingo-plasmidの安定分配遺伝子群の解析　　　　　　　　　　　　　　　
雄長誠、久留主泰朗
日本農芸化学会, 2008年03月27日, 日本農芸化学会

熱帯赤道域における海洋表層〜深層の微生物群集構造解析　　　　　　　　　　　　　　　
大森孟道; 雄長誠; 今村正裕; 下島公紀; 久留主泰朗
みらいシンポジウム, 2008年03月13日, 日本海洋研究開発機構

日本周辺海洋環境からの石油分解菌の探索とプラスミド保有性　　　　　　　　　　　　　　　
菊地真由美、関香織、久留主泰朗、北村恵子、丸山明彦、布施博
日本微生物生態学会, 2007年09月17日, 日本微生物生態学会

深海環境における酸化損傷異常塩基の浄化機構　　　　　　　　　　　　　　　
久留主泰朗
マリンバイオテクノロジー学会, 2007年05月26日, マリンバイオテクノロジー学会

Shpingobium属プラスミド由来安定分配遺伝子の機能解析　　　　　　　　　　　　　　　
雄長 誠、久留主泰朗
日本農芸化学会, 2007年03月26日

枯草菌GroEL基質のプロテオーム解析　　　　　　　　　　　　　　　
久留主泰朗、遠藤絢子
日本農芸化学会, 2007年03月26日

Sphingo-plasmi pAMI-1のプラスミド安定化遺伝子の多様性解析　　　　　　　　　　　　　　　
雄長 誠、久留主泰朗
日本微生物生態学会, 2006年10月28日

異常塩基除去に係わるNDX family 蛋白質の多様性　　　　　　　　　　　　　　　
吉荒めぐみ、久留主泰朗
日本微生物生態学会, 2006年10月28日

Plasmid pAMI-1からの高コピープラスミドの分離と応用　　　　　　　　　　　　　　　
新国洋介、津沢俊、雄長 誠、久留主泰朗
日本微生物生態学会, 2006年10月27日

Genetics and Biochemical analysis of Bacillus subtilis groEL gene　　　　　　　　　　　　　　　
Ayako Endo; Yasurou Kurusu
The 20th IUBMB Congress & 11th FAOBMB Congress, 2006年06月27日

Functional analysis of stability gene of Sphingomonas plasmid pAMI-1　　　　　　　　　　　　　　　
Makoto Ochou; Yasurou Kurusu
The 20th IUBMB Congress & 11th FAOBMB Congress, 2006年06月27日

Analysis of GroEL-substrates in Bacillus subtilis　　　　　　　　　　　　　　　
Ayako Endo; Yasurou Kurusu
106th ASM General Meeting, 2006年05月24日

Sphingomonas属プラスミドの機能解析　　　　　　　　　　　　　　　
雄長誠、斉藤美有紀、久留主泰朗
日本農芸化学会, 2006年03月27日, 日本農芸化学会

枯草菌GroEの基質の探索　　　　　　　　　　　　　　　
遠藤絢子、久留主泰朗
日本分子生物学会, 2005年12月09日, 日本分子生物学会

低温細菌Pseudoalteromonas sp. PS1M3株MutTの機能解析　　　　　　　　　　　　　　　
吉荒めぐみ、小林達矢、久留主泰朗
日本分子生物学会, 2005年12月08日, 日本分子生物学会

枯草菌ヒスチジン資化オペロンの発現制御に関わるyer遺伝子の機能解析　　　　　　　　　　　　　　　
中込久美子、久留主泰朗、織田雅直
日本分子生物学会, 2005年12月07日, 日本分子生物学会

Sphingo-plasmid pAMI-1の宿主内安定化因子の遺伝学的解析　　　　　　　　　　　　　　　
雄長誠、斉藤美有紀、久留主泰朗
日本微生物生態学会, 2005年11月01日, 日本微生物生態学会

好熱菌Geobacillus属細菌の宿主−ベクター系の開発　　　　　　　　　　　　　　　
青木典光、久留主泰朗
日本微生物生態学会, 2005年10月31日, 日本微生物生態学会

スフィンゴモナス属細菌群からの内在性プラスミドの分離　　　　　　　　　　　　　　　
宮崎勇輔、雄長誠、斉藤美有紀、久留主泰朗
日本微生物生態学会, 2005年10月31日, 日本微生物生態学会

Sphingomonas属プラスミドの機能解析　　　　　　　　　　　　　　　
久留主泰朗
有機化学物質セミナー, 2005年07月27日, 農業環境技術研究所, ［招待有り］

極限環境微生物のDNA修復機構ー細胞内異常塩基浄化機構の多様性ー　　　　　　　　　　　　　　　
久留主泰朗
マリンバイオテクノロジー学会, 2005年05月28日, マリンバイオテクノロジー学会, ［招待有り］

Bacterial discrimination by FISH using molecular chaperon GroE　　　　　　　　　　　　　　　
Nakamura. T; Maruyama, A; Kurusu,. Y
AGU Fall Meeting, 2004年12月16日, American Geophysical Union

A Bacterial temperature adaptation by molecular chaperon GroE　　　　　　　　　　　　　　　
Kurusu. Y; Nakamura. T; Endo. A; Maruyama. A
AGU Fall meeting, 2004年12月16日, American Geophysical Union

Sphingomonas属細菌由来プラスミドの機能解析　　　　　　　　　　　　　　　
斎藤美有紀、久留主泰朗
日本分子生物学会, 2004年12月10日, 日本分子生物学会

MutT機能領域の解析　　　　　　　　　　　　　　　
遠藤絢子、佐々木真弓、小林達矢、久留主泰朗
日本分子生物学会, 2004年12月10日, 日本分子生物学会

分子シャペロンgroELを用いた微生物群集解析への応用　　　　　　　　　　　　　　　
中村孝道、東陽介、内海真生、丸山明彦、久留主泰朗
日本微生物生態学会, 2004年11月23日, 日本微生物生態学会

深海由来低温細菌の突然変異抑制遺伝子mutTの解析　　　　　　　　　　　　　　　
小林達矢、久留主泰朗
日本微生物生態学会, 2004年11月22日, 日本微生物生態学会

低温細菌を宿主とする有用蛋白質高発現系の構築　　　　　　　　　　　　　　　
川井雄輝、久留主泰朗
日本微生物生態学会, 2004年11月22日, 日本微生物生態学会

好酸性超好熱性古細菌由来蛋白質の発現と解析　　　　　　　　　　　　　　　
中野新太、阿久津純一、久留主泰朗、河原林裕
第17回日本Archae研究会, 2004年07月09日

南部マリアナ海域初のブラックスモーカーサイト(Pika site)の発見とその諸性状　　　　　　　　　　　　　　　
内海真生、中村光一、掛川武、下島公起、久留主泰朗、他10名
地球惑星科学関連合同大会, 2004年05月13日

マリアナ背孤海盆拡大字軸南部の熱水地帯の掘削ーアーキアンパーク計画航海速報ー　　　　　　　　　　　　　　　
浦辺徹郎、丸茂克美、掛川武、木村浩之、久留主泰朗、他7名
地球惑星科学関連合同大会, 2004年05月13日

2003年10月, American Geophysical Union

1999年10月, American Society for Microbiology

日本農芸化学会

日本微生物生態学会

マリンバイオテクノロジー学会

日本ゲノム微生物学会

酸化ラジカル反応により生成する酸化損傷塩基の生態系影響評価に関する研究　　　　　　　　　　　　　　　
挑戦的萌芽研究
2016年04月 - 2019年03月